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实验数据分析与肠道类器官构建验证2026-05-12 08:34:05

使用GraphPadPrism8.0.1软件进行数据分析并作图,所有实验结果均重复3次,计量资料以表示。采用配对t检验和普通单因素方差分析进行统计分析。P<0.05为差异有统计学意义。为构建hiPSC来源的肠道类器官,在体外诱导分化过程大约35d。首先将hiPSC接种于Matrigel基质胶上,采用PGM1人多潜能干细胞专用培养基进行常规培养。待细胞生长至80%-95%汇合度时,进入后续诱导分化阶段。

首先,使用高浓度ActivinA处理hiPSC3d,诱导其分化为定形内胚层,形成单层细胞片状结构;随后进行中肠/后肠诱导,细胞在第2-4d期间逐渐聚集,并自组装形成三维悬浮球状结构;待球状体形成后,将其转移至低生长因子Matrigel基质胶中进行三维培养,并更换HIO阶段培养基,以促进肠道结构的进一步生长与分化。
 
接下来通过qRT-PCR及免疫荧光检测各阶段关键基因的表达情况,以验证定向诱导的有效性。结果显示,与对照组相比,DE阶段标志基因FOXA2表达显著上调,同时期的免疫荧光染色观察到FOXA2阳性细胞,表明实现DE阶段的诱导。此外,与对照组相比,中肠/后肠阶段的标志性基因CDX2在MH阶段表达显著增强,免疫荧光染色也显示CDX2阳性细胞的大量存在,进一步确认了中肠/后肠诱导的成功。随后,在Matrigel基质胶中培养的HIO呈现出肠道特异性上皮蛋白的表达,并通过qRT-PCR检测到肠道成熟标志基因FOXF-1、LGR5、OLFM4、MUC2、SOX9和iFABP的表达相较对照组显著上调,表明类器官已成功进入功能成熟阶段。这些结果综合证明了人源肠道类器官的高效诱导与分化。
 
出自《5-氟尿嘧啶致人源肠道类器官损伤的研究》作者方佳瑞,李晓彤,朱恒。